タンパク質の濃度の計算
吸光度（A280、またはブラッドフォード法のA595）を入れると、タンパク質の濃度を計算します。モル吸光係数や検量線の傾きは、使うタンパク質・実験ごとに違うため、目安の値として入れてください。
くわしい条件を変える（なくても計算できます）
計算方法
吸光度280nm（A280）法 ランベルト・ベールの法則吸光度 ＝ 吸光係数 × 濃度 × 光路長を使い、濃度 ＝ 吸光度 ÷（吸光係数×光路長）で求めます。芳香族アミノ酸（トリプトファン・チロシンなど）が光を吸収する性質を利用した、簡単で早い方法です。
ブラッドフォード法 色素がタンパク質と結合すると吸収する波長（595nm付近）が変わる性質を利用します。濃度がわかっている標準タンパク質（多くはウシ血清アルブミン）で検量線（吸光度と濃度のグラフの傾き・切片）を作り、濃度 ＝（吸光度−切片）÷傾きで、測定したいタンパク質の濃度を求めます。
どちらの方法も、使うタンパク質の種類によって吸光係数・発色の強さが変わるため、値は目安です。正確に比べたいときは、同じ種類のタンパク質で検量線を作ってください。
出典：ランベルト・ベールの法則（吸光度＝吸光係数×濃度×光路長）の定義。ブラッドフォード法は色素の吸収波長の変化を利用した定量法
よくある質問
A280法とブラッドフォード法の違いは？
A280法はタンパク質そのものの吸光度を測る早い方法、ブラッドフォード法は色素を加えて発色させてから測る方法です。それぞれ得意な濃度の範囲や、注意点が違います。
モル吸光係数はどこで調べる？
使うタンパク質のアミノ酸配列がわかっていれば、含まれるトリプトファン・チロシン・システインの数から計算できます。既知のタンパク質なら、文献値が公表されていることもあります。
検量線とは？
濃度がわかっている標準タンパク質を何段階かの濃度でつくり、吸光度を測ってグラフにしたものです。傾きと切片から、未知の濃度を計算できます。
吸光度が0のときは？
濃度も0として計算されます（タンパク質がほとんど含まれていない状態です）。
濃度がマイナスになってしまったら？
検量線の切片や、吸光度の測り方（ブランク補正など）を見直してください。測定エラーの可能性があります。